CD304/Neuropilin-1 Rabbit PolymAb® (A26530PM)

Проведен анализ методом вестерн-блоттинга различных клеточных лизатов с использованием поликлонального кроличьего антитела к CD304/Neuropilin-1 (A26530PM) в разведении 1:1000. Инкубацию первичных антител осуществляли в течение ночи при температуре 4 °C. В качестве вторичных антител применяли козьи антитела против IgG кролика (H+L), конъюгированные с пероксидазой хрена (HRP) (AS014), в разведении 1:10 000. Нагрузка белка составляла 25 мкг на дорожку. Блокирование проводили с использованием 3% обезжиренного сухого молока в буфере TBST. Детекцию сигналов выполняли с помощью набора ECL Basic Kit (RM00020) при времени экспозиции 90 с.

Клетки Neuro-2a были визуализированы методом конфокальной микроскопии с использованием поликлонального кроличьего антитела к CD304/нейропилину-1 (A26530PM, разведение 1:200) с последующей инкубацией с козьими антителами против IgG кролика (H+L), конъюгированными с Cy3 (AS007, разведение 1:500) (красный сигнал). Для контрастного окрашивания применяли моноклональное мышиное антитело к α-тубулину (AC012, разведение 1:400) с последующей инкубацией с козьими антителами против IgG мыши (H+L), конъюгированными с ABflo® 488 (AS076, разведение 1:500) (зеленый сигнал). Ядра клеток окрашивали DAPI (синий сигнал). Увеличение объектива: 100x.

Клетки HUVEC были визуализированы методом конфокальной микроскопии с использованием поликлонального кроличьего антитела к CD304/нейропилину-1 (A26530PM, разведение 1:200) с последующей инкубацией с конъюгированным с Cy3 козьим антителом против IgG кролика (H+L) (AS007, разведение 1:500) (красный сигнал). Для контрастного окрашивания применяли моноклональное мышиное антитело к α-тубулину (AC012, разведение 1:400) с последующей инкубацией с конъюгированным с ABflo® 488 козьим антителом против IgG мыши (H+L) (AS076, разведение 1:500) (зеленый сигнал). Ядра клеток окрашивали DAPI (синий сигнал). Увеличение объектива: 100x.