[KO Validated] Rbm7 Rabbit mAb (A27655)

Иммунопреципитацию белка Rbm7 проводили из 300 мкг экстракта ткани семенников мыши с использованием 0,5 мкг моноклонального кроличьего антитела к Rbm7 (A27655, валидировано на нокаутных моделях). В качестве изотипического контроля для преципитации образца Control IgG применяли кроличий IgG (AC005). Образцы после иммунопреципитации элюировали 1× восстанавливающим буфером Лэммли. Дорожка «Input» представляла 10% от общего количества исходного материала. Вестерн-блоттинг иммунопреципитатов выполняли с использованием того же моноклонального кроличьего антитела к Rbm7 (A27655, валидировано на нокаутных моделях) в разведении 1:4000.

Проведено конфокальное микроскопирование ткани семенников крысы, заключенной в парафин, с использованием валидированного на нокауте (KO) моноклонального кроличьего антитела к Rbm7 (A27655, разведение 1:200). Детекцию осуществляли с помощью вторичного антитела — козьего анти-IgG кролика (H+L), конъюгированного с Cy3 (AS007, разведение 1:500, красная флуоресценция). Ядра клеток окрашивали DAPI (синяя флуоресценция). Перед иммунофлуоресцентным окрашиванием проводили высокотемпературную антигенную реставрацию в 0,01 М цитратном буфере (pH 6,0). Увеличение объектива: 40x.

Проведено конфокальное микроскопирование включенной в парафин ткани толстой кишки крысы с использованием валидированного на нокауте (KO) моноклонального кроличьего антитела к Rbm7 (A27655, разведение 1:200). Детекцию осуществляли с помощью конъюгированного с Cy3 козьего антитела против IgG кролика (H+L) (AS007, разведение 1:500) (красная флуоресценция). Ядра окрашивали DAPI (синяя флуоресценция). Перед иммунофлуоресцентным окрашиванием проводили высокотемпературную антигенную реставрацию в 0,01 М цитратном буфере (pH 6,0). Увеличение объектива: 40x.