Integrin alpha 1/CD49a Rabbit mAb (A26489)

Клетки Neuro-2a визуализировали методом конфокальной микроскопии с использованием моноклонального кроличьего антитела к интегрину альфа-1/CD49a (A26489, разведение 1:200) с последующей инкубацией с козьими антителами против IgG кролика (H+L), конъюгированными с Cy3 (AS007, разведение 1:500) (красный сигнал). Для контрастного окрашивания применяли моноклональное мышиное антитело к α-тубулину (AC012, разведение 1:400) с последующей инкубацией с козьими антителами против IgG мыши (H+L), конъюгированными с ABflo® 488 (AS076, разведение 1:500) (зеленый сигнал). Ядра клеток окрашивали DAPI (синий сигнал). Увеличение объектива: 100x.

Проведено конфокальное микроскопирование ткани легкого мыши, заключенной в парафин, с использованием моноклонального кроличьего антитела к интегрину альфа-1/CD49a (A26489, разведение 1:200). Детекцию осуществляли с помощью козьих антител против IgG кролика (H+L), конъюгированных с Cy3 (AS007, разведение 1:500) (красная флуоресценция). Ядра клеток окрашивали DAPI (синяя флуоресценция). Перед иммунофлуоресцентным окрашиванием проводили высокотемпературную антигенную реставрацию в цитратном буфере (0,01 М, pH 6,0). Увеличение объектива: 40x.

Проведен анализ методом вестерн-блоттинга различных клеточных лизатов с использованием моноклонального кроличьего антитела к интегрину альфа-1/CD49a (A26489) в разведении 1:5000 (инкубация проводилась в течение ночи при 4°C). В качестве вторичного антитела применяли козье антитело против IgG кролика (H+L), конъюгированное с пероксидазой хрена (HRP) (AS014), в разведении 1:10000. Нагрузка белка составляла 25 мкг на дорожку. Блокирование осуществляли с помощью 3% обезжиренного сухого молока в буфере TBST. Детекцию проводили с использованием набора ECL Basic Kit (RM00020). Время экспозиции — 20 с.